PROTOCOLO PARA EL ANÁLISIS ESPERMÁTICO AUTOMATIZADO EN LUBINA EUROPEA (Dicentrarchus labrax)

La lubina es un pez perciforme blanco de gran valor comercial y nutricional, por su bajo contenido graso y aporte de proteínas, ácidos grasos omega-3, vitaminas y minerales. Por esto, es necesario la optimización de su producción. El análisis seminal computarizado es fundamental para favorecer los programas de
reproducción, y permite evaluar con mayor precisión la calidad espermática, la selección de reproductores fértiles y aumentar la eficiencia en los sistemas de producción. Objetivo. Optimizar el protocolo de análisis espermático a través de sistemas computarizados CASA (Computer-assisted semen analysis) en pez
lubina. Materiales y Métodos. Los peces tenían entre 6-7 años y procedían de cuatro localidades ubicadas en la costa mediterránea (España). Se utilizaron microsatélites para el genotipado, lo que permitió conocer el grado de parentesco entre los reproductores analizados con el propósito de mantener una mayor variación genética entre estos previo a su estabulación en las instalaciones del Instituto de Acuicultura Torre de la Sal (IATS, Castellón, España). Los animales se mantuvieron bajo condiciones naturales de
fotoperiodo y temperatura en el IATS (40°N; 0°E) siguiendo los protocolos de cría descritos para esta especie y a densidades menores de 15 kg m-3. Las muestras de esperma se obtuvieron durante la época reproductiva de la especie (Diciembre-Marzo). Se utilizaron 9 animales alimentados con concentrado
comercial regular. Se analizaron entre seis y ocho repeticiones por animal. La evaluación del semen se realizó con una cámara de recuento espermático ISAS®-R2C10, un objetivo Ph- y escala 10X. Los tiempos de captura fueron tomados cada 15 o 30 segundos desde que se colocó la muestra y se activara con agua de mar. Se utilizó una tasa de fotogramas de 140 fps (frame per second). Se utilizó el sistema ISAS® v1 y el módulo de análisis CASA-mot. Se configuró con restricciones entre 2 - 60 μm2 para el valor del área de partícula. Resultados. Hubo variabilidad entre individuos para los parámetros de movilidad espermática. El animal 7 presentó los valores más altos de VCL (205,9 ± 4,7 μm/s), velocidad promedio (VAP) (150,8 ± 4,7 μm/s) y frecuencia de entrecruzamiento (BCF) (35,0 ± 1,0 Hz) que los demás animales. El animal 8 presentó valores más bajos de VSL (79,4 ± 3,7 μm/s) e índice de linealidad (LIN) (47,9 ± 0,9%). El análisis
por tiempo de captura presentó una disminución en todos los parámetros evaluados conforme avanzó el tiempo de captura (p<0,05). La VCL disminuyó de 313,1 ± 1,3 μm/s (15 ± 2 s) a 112,8 ± 6,4 μm/s (60 ± 2 s), mientras que la VSL descendió de 273,4 ± 1,5 a 38,8 ± 7,2 μm/s en el mismo tiempo. Conclusiones. Los
resultados muestran variación en los parámetros de movilidad espermática entre los individuos evaluados. Estas diferencias pueden atribuirse a factores como la calidad seminal individual y diferencias fisiológicas. El análisis por tiempo de captura mostró una disminución de todos los parámetros cinemáticos conforme avanzó el tiempo. Estos resultados sugieren que las capturas para el análisis espermático de la lubina deben realizarse en los primeros 30 segundos.